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胆固醇基-普鲁兰自组装纳米粒的体外HepG2细胞摄取研究(2)


的振动吸收峰;1728 cm-1 为羰酯基的吸收峰;1637 cm-1 为普鲁兰糖环本身吸收峰;FITC 在
2015 cm-1 处异硫氰酸基团的特征吸收峰消失,表明异硫氰酸基团参与了反应。
135 2.1.2 FITC-CHSP 的核磁谱图
图2 核磁谱图 (a) 普鲁兰 (b) FITC (c) FITC-CHSP
Fig.2.1H NMR spectrum of (a) pullulan, (b) FITC, and (c) FITC-CHSP
 
CHSP 的1H NMR (DMSO-with TMS, 140 ppm) 在5.60-11.0 ppm 范围内无核磁峰。
FITC-CHSP (图2, b)的1H NMR:0.40-2.40 (胆固醇上的氢),2.60-4.60 (glucose 2H、3H、4H、
5H和6H),4.60 (glucose1Hα(1-6)),5.05 (glucose1Hα(1-4)),4.60-5.57(glucose,-OH),5.60-8.2 (FITC
分子上的氢), 10.16 (FITC,-COOH 即分子上羧基上的氢);故由1H NMR 图谱可初步确证
FITC 化学键合到胆固醇基普鲁兰多糖长链上。由1.2.1 所述公式计算得到每100 个糖单元取
145 代4.3 个FITC。
2.2 FITC-CHSP 纳米粒的表征
动态光散射测得FITC-CHSP 纳米粒的平均粒径为(69.0 ±2.2)nm,粒径分布均匀。
图3. FITC-CHSP透射电镜照片
150 Fig.3. Transmission electron micrograph (TEM) of FITC-CHSP nanoparticles
透射电镜结果如图3 所示,表明FITC-CHSP 纳米粒为规则球形结构,其粒径约为60 nm,
远小于动态光散射实验测得的纳米粒在溶液中的粒径,这可能是TEM 样品制备过程中的干
燥过程引起纳米粒表面的塌陷所致。
155 2.3 体外细胞摄取实验
2.3.1 标准曲线的建立
以细胞裂解液为溶剂,配制FITC-CHSP 纳米粒的浓度梯度工作液,测定其荧光光度值,
以荧光光度值(F)对纳米粒的浓度(C)作图,结果发现,当纳米粒的浓度在1-40 μg/mL
范围内,F 与C 呈良好的线性关系,线性方程为F= 8.43C + 13.72(R2 = 0.9990)。
160 2.3.2 孵育时间对摄取的影响
 
图4 孵育时间对FITC-CHSP 纳米粒摄取的影响
Fig.4. Effect of incubation time on nanoparticle uptake at 37°C by HepG2. The concentration of nanoparticles used
was 0.15 mg/mL. Data represents 165 mean ± SD (n= 4).
如图4 所示,在2 h 内,纳米粒的摄取量随着孵育时间的增加而增大,2 h 后,摄取量
趋于平稳,这可能是由于饱和所致,所以2 h 被选择后续研究。
2.3.3 FITC-CHSP 纳米粒浓度对摄取的影响
170
图5 FITC-CHSP纳米粒浓度对摄取的影响
Fig.5. Effect of concentration on nanoparticle uptake at 37°C by HepG2. Various nanoparticle concentrations
ranging from 0.05 to 2 mg/mL were applied to HepG2 culture for 2 h. Data represents mean ± SD (n= 4).
175 如图5 所示,HepG2 细胞对FITC-CHSP 纳米粒的摄取量随着纳米粒浓度的增大而增大,
但是摄取率随着纳米粒浓度的增大而减小。
2.3.4 温度对摄取的影响
 
180 图6 温度对FITC-CHSP 纳米粒摄取的影响
Fig.6. Effect of temperature on nanoparticle uptake by HepG2. Two different temperatures 4°C and 37°C were
used to evaluate the uptake of three different concentrations of nanoparticles (0.05, 0.15, and 0.25 mg/mL). Bars
represent mean ± SD (n= 4).
185 如图所示, 不同浓度的FITC-CHSP 纳米粒与HepG2 分别在4°C 和37°C 孵育2 小时后,
4°C 时HepG2 对不同浓度FITC-CHSP 纳米粒的摄取量减少至37°C 对应浓度纳米粒摄取量
的15-17%,表明37°C 时,85%的FITC-CHSP 纳米粒是通过能量依赖的内吞途径进入细胞,
而剩余的15%的纳米粒则可能是通过物理吸附或扩散进入细胞。
2.4 内吞抑制实验
190
图7 几种内吞抑制剂(10 mM 叠氮化钠、6 μg/mL of 氯丙嗪、10 mM 甲基-β-环糊精以及50 μM 阿米洛利)
对HepG2 细胞摄取FITC-CHSP 纳米粒的影响,纳米粒的浓度为0.15 mg/mL。
Fig.7. Uptake of FITC-CHSP nanoparticles by HepG2 cells at 37°C (control) in the presence of 10 mM of sodium
azide, 6 μg/mL of chlorpromazine, 10 mM M-β-CD, and 50 μM of amiloride. Incubation time was 2 h and the
195 dosing concentration was 0.15 mg/mL. Mean ± SD, n=4.
如图7 所示,与对照组相比,10 mM 叠氮化钠、6 μg/mL of 氯丙嗪和10 mM 甲基-β-
环糊精实验组分别使纳米粒的摄取量减少了24.0%、26.1%和39.7%,而50 μM 阿米洛利对
纳米粒的摄取没有显著影响(p > 0.05)。结果表明FITC-CHSP 纳米粒经HepG2 细胞的摄取是
200 一个能量依赖的过程,网格蛋白依赖性和小窝蛋白依赖性内吞途径均参与了该摄取过程。
 
3 结论
成功制备了FITC-CHSP 纳米粒,并对其进行了表征。摄取实验表明,纳米粒的浓度、
孵育时间以及温度均会对HepG2 摄取该纳米粒产生影响,内吞抑制试验表明网格蛋白依赖
性和小窝蛋白依赖性内吞途径均参与了该摄取过程。这为疏水改性普鲁兰纳米粒作为药物载
205 体或基因载体的进一步研究和实际应用提供理论依据。
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